小鼠心肌成纖維細胞的組織來源于實驗動物的正常心臟組織，心臟是脊椎動物身體中重要的一個器官，主要功能是提供壓力，把血液運行至身體各個部分。心臟的作用是推動血液流動，向器官、組織提供充足的血流量，以供應氧和各種營養(yǎng)物質，并帶走代謝的終產物（如二氧化碳、無機鹽、尿素和尿酸等），使細胞維持正常的代謝和功能。
       心臟中，心肌成纖維細胞約占正常心肌組織細胞總數的60%-70%，是心臟中非心肌細胞的主要組成部分，廣泛存在于心臟組織中，包圍心肌細胞，連接心肌細胞間質，與缺血性心臟病、炎癥、肥大、梗死等病理狀態(tài)密切相關。細胞生長方式以長梭狀細胞，貼壁培養(yǎng)。

       小鼠心肌成纖維細胞的方法有很多，鏡像綺點提供的心肌成纖維細胞分離方法有兩種，一種是貼塊法，一種是消化法，這兩種方法都可以用于分離和培養(yǎng)原代細胞。

       實驗器械：
       1.培養(yǎng)皿
       2.T-25細胞培養(yǎng)瓶
       3.100目不銹鋼網篩
       4.200目不銹鋼網篩
       5.眼科剪
       6.眼科鑷
       7.離心管（15ml、50ml）

       實驗分離和培養(yǎng)步驟：

       1. 小鼠頸椎脫臼處死后，剃除腹胸部的被毛，放入裝有75%酒精的燒杯中浸泡5min。

       2. 取出小鼠，在無菌環(huán)境下打開胸腔，取出心臟組織，注入盛有無菌1×PBS的培養(yǎng)皿中，洗凈組織表面的血液。

       3. 將清洗干凈的心臟組織轉入裝有75%酒精的培養(yǎng)皿中浸泡15s以殺死大多數的心臟被膜細胞，浸泡完成后立即轉入裝有無菌1×PBS的培養(yǎng)皿中震蕩清洗。

       4. 清洗完成后，用剪刀鑷子配合除去主動脈弓和心房組織，僅保留心室部分，再次用1×PBS清洗去除心室內的血液。

       5. 將清洗干凈的心室組織用剪刀減成1mm3大小左右的碎塊，之后用PBS清洗若干次后按下述兩種方法之一進行后續(xù)操作。

       A.貼塊法

       6. 將清洗好的碎塊轉入另一培養(yǎng)皿中，用0.25%胰蛋白酶消化液浸泡組織，室溫消化3-5min。

       7. 消化完成后，添加數毫升FBS終止消化，之后吸棄液體，加PBS清洗組織塊1伺次后，用200ul吸頭將組織塊平均接種于T-25培養(yǎng)瓶的培養(yǎng)面上，之后將培養(yǎng)瓶放置于37℃二氧化碳培養(yǎng)箱中，靜置2-4h。

       8. 待組織處于略微脫水的狀態(tài)時，小心添加2ml*培養(yǎng)基，添加時注意盡量不要將組織塊沖起，要使培養(yǎng)基接觸所有的組織塊。

       9. 之后放入培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)，一般2-4天后成纖維細胞會從組織塊周圍爬出，待爬出的細胞有較多數量時，可將細胞消化下來，去除組織塊，轉入另一培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。

       B.消化法

       6. 將清洗好的碎塊轉入另一離心管中，加入混合消化液（0.08%胰酶+0.06%Ⅱ型膠原酶）37℃水浴消化8min后，吸取上層混懸液棄去。

       7. 余下組織加入混合消化液10ml，37℃水浴震蕩消化10min；吸取上層懸液至另一離心管中，加入適量FBS終止反應；剩余沉淀物再加消化液消化3-5次，直至組織塊*消化。

       8. 按1∶1加入含血清的培養(yǎng)基，中止酶反應，懸液過150目網篩去除較大的組織塊。

       9. 收集全部中止后的消化液于離心管中，300g，離心10 min，棄去上清，加入培養(yǎng)液重懸細胞后計活細胞數。

      10. 調整細胞密度以1× 106個/ml 接種入的T-25培養(yǎng)瓶中，每瓶添加2ml細胞懸液。

      11. 培養(yǎng)瓶放置于37℃，5% CO2培養(yǎng)箱中靜置40min后，吸棄上清液以去除未貼壁的非成纖維細胞和死細胞，再添加5ml*培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。

       除了上述的細胞分離方法以外，鏡像綺點還有很多關于其他細胞的分離方法，想要學習的小伙伴可以來鏡像綺點進行現場學習，如果想要其他原代分離培養(yǎng)方法，可在購買相應的細胞過程中，贈送該細胞的分離方法及培養(yǎng)條件，想要了解更多，打電話或咨詢相關工作人員。